MitoBright LT Green

ミトコンドリア染色用色素 Green

長時間細胞に滞留する
血清培地中で染色できる
蛍光顕微鏡・フローサイトメーターに対応

製品コード

MT10　 MitoBright LT Green

容　量	本体価格
20 μl	￥6,000
400 μl	￥12,000
400 μl x 3	￥30,000

マイトファジーのタイムラプス観察動画を公開しました！

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ミトコンドリア染色：本製品、マイトファジー染色：Mtphagy Dye
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試験成績書

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性質

ミトコンドリアは細胞内のエネルギー生産のみならずさまざまな細胞機能に関与する多機能なオルガネラであり、活発な融合と分裂サイクルによりその形態を変化させています。これはミトコンドリアダイナミクスと言われ、最近では、ミトコンドリアの形態制御異常が神経変性疾患、代謝疾患や老化などに関与することからミトコンドリアの動態を長期間観察する需要が増えています。

ミトコンドリア関連研究試薬の比較関連製品の特徴を一覧でご紹介

マニュアル

技術情報

MitoBright LT は、他とココが違う

長時間細胞に滞留する

HeLa 細胞をHBSS にて洗浄後、各MitoBright LT または既存試薬にて染色し、血清入り培地に入れ替え、4 日間培養後ミトコンドリアを観察しました。その結果、既存試薬は蛍光強度が4 日後に大きく低下したのに対し、 MitoBright LT は蛍光強度が維持され、ミトコンドリアを明瞭に観察できました。さらに継続して培養を行った結果、 MitoBright LT は7 日後もミトコンドリアに滞留していることが確認されました。

＜検出条件＞
MitoBright LT Green 、既存試薬（T 社）Green	：Ex 488 nm/Em 500–560 nm
MitoBright LT Red 、既存試薬（T 社）Red	：Ex 561 nm/Em 560–620 nm
MitoBright LT Deep Red 、既存試薬（T 社）Deep Red	：Ex 640 nm/Em 650–700 nm

使用回数の目安

MitoBright LT 容量	蛍光顕微鏡	フローサイトメーター (working solution1 mL使用した場合)
MitoBright LT 容量	（35 mm dish, working solution 2 mL/dish使用した場合)	フローサイトメーター (working solution1 mL使用した場合)
20 μL	10 枚	20 回
400 μL	200 枚	400 回
400 μL x 3	600 枚	1200 回

*100 nmol/L MitoBright LT working solutionを調製した場合。

血清入りの培地で染色できる

MitoBright LT と既存試薬にて、血清有無の培地で染色しました。既存試薬は血清入り培地で染色した場合、蛍光が暗くなるのに対し、MitoBright LT は血清入り培地中で染色しても蛍光強度が低下することがなく、ミトコンドリアを明瞭に染色しました。

マイトファジーのリアルタイム観察

HeLa細胞をCCCP処理し、マイトファジー検出試薬（MtphagyDye）及びミトコンドリア染色試薬（本製品）にて共染色しタイムラプス撮影(6時間)しました。

＜検出条件＞
装置：LSM-700 Laser scanning confocal microscope (LSCM)
　　　(Carl Zeiss, Oberkochen, Germany)
励起波長：MitoBright LT Green 488 nm
　　　　MtphagyDye 555 nm
対物レンズ：63 倍
撮影時間　：6 時間
撮影インターバル：15 秒

フローサイトメーターでの検出

Jurkat 細胞(3.2 x 10⁵ cells/mL) をRPMI 培地 (10% fetal bovine serum, 1% penicillin-streptomycin) で 5 cm ディッシュに播種し、37℃、5% CO₂ インキュベーター内で一晩培養した。
培地を取り除き、MitoBright LT working solution (0.1 μmol/L, 5 mL) を添加し37℃ で30 分間インキュベートした。溶液を取り除き、5 mL のRPMI 培地を用いて2 回洗浄した。
RPMI 培地を添加し、細胞培養を継続し、その細胞を2 日毎にフローサイトメーターで解析した。

コラーゲンコートプレートを用いたミトコンドリア検出

ミトコンドリアの形態評価は高倍率で観察するため、コラーゲンコートしたガラスプレートがよく使用されます。
既存のミトコンドリア染色試薬は、コラーゲンに吸着しバックグラウンドを上昇させる問題がありましたが、MitoBright LTシリーズはバックグラウンドの影響がなく鮮明にミトコンドリアを染色できます。

MitoBright LT Green	既存試薬（T社）
	スケールバー: 50 μm

＜染色条件＞
HeLa細胞をコラーゲンコートプレートに播種し、24時間培養後　上澄みを抜き取り、HBSS にて洗浄した。
100 nmol/L MitoBright LT Green working solution を添加し、30分インキュベート後上澄みを抜き取り、HBSS にて洗浄し蛍光顕微鏡で観察した。

＜観察条件＞
Ex 488 nm, Em 500-560 nm

＜結果＞
既存試薬はバックグラウンドが見られましたが、MitoBright LTで染色したミトコンドリアはバックグラウンドの影響がなく、鮮明にミトコンドリアを染色しました。

ラインナップと各試薬の蛍光特性

参考文献

参考文献を表示する

文献No.	対象サンプル	装置	引用（リンク）
1	細胞（U251）	蛍光顕微鏡	Y, Shinoda, K. Kujirai, K. Aoki, M. Morita, M. Masuda, L. Zhang, Z. Kaixin, A. Nomoto, T. Takahashi, Y. Tsuneoka, J. Akimoto, H. Kataoka, R. Rachi, A. Narumi, T. Yoshimura, S. Yano and Y. Fujiwara, ”Novel Photosensitizer β-Mannose-Conjugated Chlorin e6 as a Potent Anticancer Agent for Human Glioblastoma U251 Cells.", Pharmaceuticals., 2020, 13(10), 316.
2	酵母 (Lipomyces starkeyi)	蛍光顕微鏡	L. Duan and K. Okamoto, "Mitochondrial dynamics and degradation in the oleaginous yeast Lipomyces starkeyi", Genes Cells., 2021, 10.1111/gtc.12875 .

よくある質問

Q MitoBright LT は DMSO溶液ですが、凍結融解を繰り返しても劣化しないのでしょうか？: A

小社では凍結融解を30回繰り返した溶液を用いて、染色が可能であったことを確認しております。

Q MitoBright LTとMitoBrightの違いを教えてください。: A

MitoBright LTはMitoBrightの細胞内滞留性を高めた製品です。また、MitoBright LTはDMSOに溶解した製品であり、染色溶液を調製する手間がなくすぐにお使い頂けます。その他の性能の違いは下記表をご参照ください。

Q MitoBright LTシリーズで染色した後に脱分極すると、染色度合いに影響はありますか？: A

脱分極条件や細胞種などにより影響は確認されます。また、MitoBright LTの各色素で影響の度合は異なります。
参考として小社ではHeLa細胞を各MitoBright LTで染色し、下記条件にて脱分極処理を行って蛍光染色の変化を観察しました。

＜染色条件＞
HeLa細胞をMitoBright LT (100 μmol/l、30分インキュベーション)にて染色しHBSSにて洗浄後
FCCP処理(100μmol/l 、60分インキュベーション)しHBSSにて2回洗浄後観察した。

＜検出条件＞
MitoBright LT Green :Ex 488 nm/Em 500–560 nm
MitoBright LT Red :Ex 561 nm/Em 560–620 nm
MitoBright LT Deep Red :Ex 640 nm/Em 650–700 nm