DAPRed - Autophagy Detection
オートファジー（オートファゴソーム）の検出試薬
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製品コードD677 DAPRed - Autophagy Detection
| 容 量 | メーカー希望 小売価格 |
富士フイルム 和光純薬 |
|---|---|---|
| 5 nmol | ￥47,100 | 340-09551 |
DAPRedの最適濃度の検討については、
よくある質問の「DAPRedの最適濃度の検討方法を教えてください」
をご覧ください。
製品の概要
オートファジーは、細胞内の不要なタンパク質・細胞内小器官等の再利用や代謝のための分解機構として様々な疾患への関与が示唆されています。DAPRedは培養細胞に添加するだけで簡便にオートファジーを検出できる蛍光試薬です。
DAPRedはオートファゴソーム膜に取り込まれ蛍光を発します。一方、DALGreenは凝集タンパク質等が分解されるオートリソソーム段階で蛍光を発します。この様にDAPRedとDALGreenは、オートファゴソーム形成およびリソソームとの融合・内容物の分解”の過程を試薬の添加だけでモニタリングすることができます。
マニュアル
技術情報
原理
オートファゴソーム膜が形成される際に、DAPRedは膜内に取り込まれ、脂溶性環境下に応答し蛍光が増大します。なお、オートファジーマーカーのLC3 を指標とした検出法とも高い相関性が得られています。
技術や使用製品に関する補足
グルタミン代謝とオートファジー
グルタミナーゼの安定化を介してオートファジーとグルタミノリシスを促進するタンパク質に関する報告例を紹介！
その他、疾患と細胞内代謝指標との関連性をマップでわかりやすく紹介しています。
操作は試薬の添加だけ
遺伝子導入が不要。準備した細胞に試薬を添加するだけの簡単操作で蛍光イメージングを実現できます。
オートファジー検出試薬の比較表
ご使用の装置で検出可能な蛍光特性を確認の上、ご使用ください。
| 対応装置 | 蛍光特性 | 容量 / 使用回数 の目安 |
既存検出法 | |||
|---|---|---|---|---|---|---|
| 蛍光顕微鏡 | フローサイト メーター |
プレート リーダー |
||||
| 関連製品DAPGreen (オートファゴソーム検出) |
○ | ○ | ○ | Ex. 425-475 Em. 500-560 ※ 共焦点顕微鏡では 488 nmにて励起可能 |
5 nmol x 1 / 35 mm dish: 25枚分 (0.1 μmol/lで使用時) |
LC3-GFP MDC Cyto-ID など |
| DAPRed | ○ | × | × | Ex. 500-560 nm Em. 690-750 nm |
5 nmol x 1 / 35 mm dish: 25枚分 （0.1 μmol/lで使用時） |
|
| DALGreen (オートリソソーム検出) |
○ | ○ | × | Ex. 350-450 Em. 500-560 ※ 共焦点顕微鏡では 488 nmにて励起可能 |
20 nmol x 1 / 35 mm dish: 10枚分 (1.0 μmol/lで使用時) |
LC3-GFP-RFP など |
DAPRedとDALGreenの共染色
オートファゴソーム染色試薬DAPRedとオートリソソーム染色試薬DALGreenにより、HeLa細胞を染色後、飢餓培養によるオートファジーの誘導を確認しました。
■ 結果
アミノ酸不含培地で培養したHeLa細胞において、DAPRedとDALGreenの蛍光の増大が確認されました。
■ 検出条件
| DAPRed | ：Ex. 561 nm / Em. 600-700 nm |
| DALGreen | ：Ex. 488 nm / Em. 500-563 nm |
| スケールバー | ：20 μm |
■ オートファジー誘導条件
DAPRedおよびDALGreenで染色後のHeLa細胞を増殖培地またはアミノ酸不含培地にて5時間培養し、共焦点顕微鏡にて観察しました。
実験例：飢餓培養によるオートファジーとグルコース取込み変化
HeLa細胞をオートファゴソーム染色試薬DAPRedとオートリソソーム染色試薬DALGreenで染色した後、アミノ酸不含培地による飢餓培養を3時間行いオートファジーを誘導しました。DAPRedおよびDALGreenの蛍光強度が増大したことでオートファジーを確認し、また、Glucose Uptake Probe-Blueを用いて細胞のグルコース取り込み能力の上昇も観察されました。
<検出条件>
落射型蛍光顕微鏡
Blue: Ex = 340-380 nm, Em = 435-485 nm
Green: Ex = 450-490 nm, Em = 500-550 nm
Red: Ex = 533-557 nm, Em = 570-640 nm
スケールバー: 50 μm
スペクトルデータ
参考文献
| 文献No. | 対象サンプル | 装置 | 引用（リンク） |
|---|---|---|---|
| 1) | 細胞 （HUVEC） |
蛍光顕微鏡 | X. Chen, X. Yan, J. Liu and L. Zhang, " Chaiqi decoction ameliorates vascular endothelial injury in metabolic syndrome by upregulating autophagy.", Am. J. Transl. Res., 2020,12(9), 4902. |
| 2) | 細胞 （HeLa） |
蛍光顕微鏡 | H. Fang , S. Geng, M. Hao, Q. Chen, M. Liu, C. Liu, Z. Tian, C. Wang, T. Takebe, J-L Guan, Y. Chen, Z. Guo, W. He and J. Diao, "Simultaneous Zn2+ tracking in multiple organelles using super-resolution morphology-correlated organelle identification in living cells ", Nat Commun, 2021, 12(1), 109. 10.1016/j.envpol.2019.07.105. |
| 3) | 細胞 （HCT116; HCT8） |
蛍光顕微鏡 | H. Sun, R. Wang, Y. Liu, H. Mei and X. Liu , "USP11 induce resistance to 5-Fluorouracil in Colorectal Cancer through activating autophagy by stabilizing VCP", J Cancer , 2021, 12(8), 2317. |
| 4) | 細胞 （MEF) |
蛍光顕微鏡 | M. Yagi, T. Toshima, R. Amamoto, Y. Do, H. Hirai, D. Setoyama, D. Kang and T. Uchiumi, "Mitochondrial translation deficiency impairs NAD+-mediated lysosomal acidification", EMBO J, 2021, doi:10.15252/embj.2020105268. |
| 5) | 細胞 （SH-SY5Y) |
蛍光顕微鏡 | Chang-ki Oh, Nima Dolatabadi, Piotr Cieplak, Maria T. Diaz-Meco, Jorge Moscat, John P. Nolan, Tomohiro Nakamura and Stuart A. Lipton, "S-Nitrosylation of p62 Inhibits Autophagic Flux to Promote α-Synuclein Secretion and Spread in Parkinson’s Disease and Lewy Body Dementia", J. Neurosci., 2022, doi:10.1523/JNEUROSCI.1508-21.2022. |
よくある質問
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Q
DMSO stock solutionは、どのくらい安定ですか？
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A
調製後は、-20℃、遮光下で保存してください。調製後1ヶ月間安定です。
また、使用量に応じて小分けし保存することをお勧めします。
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Q
Working solutionは、どのくらい安定ですか？
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A
Working solutionの保存はできません。用時調製してください。
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Q
推奨の励起・蛍光フィルターを教えてください。
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A
推奨フィルターは下記の通りです。
励起フィルター：500～560 nm
蛍光フィルター：690～750 nm
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Q
共染色時の注意点を教えてください。
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A
本試薬はストークシフトが長い蛍光特性を持ちます。そのため、ご使用の前に本試薬と共染色試薬の蛍光波長を必ずご確認の上、適切な励起・検出波長に設定してください。
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Q
DAPRedの最適濃度の検討方法を教えてください。
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A
試薬の特性により、試薬の濃度が高すぎたり低すぎたりすると、オートファジー誘導時と誘導していないコントロールとの差が判りにくい場合があります。
下記の情報を参考に試薬濃度の検討することをお勧めします。細胞種毎でDAPRedの最適濃度が異なります。
DAPRedを薄い濃度から(目安0.05 μmol/l）から数点段階的に振ってご検討ください(濃い濃度は0.4 μmol/lを目安としてください)。(参考)
小社では、HeLa, HepG2、CHO細胞にて、DAPRedの最適濃度の検討を行いました。
DAPRedを下記濃度で染色し、アミノ酸不含培地にて培養し、オートファジーを誘導しました。
その結果、下記の赤字の濃度条件ではコントロールとの差が見られました。細胞種 検討濃度 HeLa 0.4 µmol/l 0.2 µmol/l 0.1 µmol/l 0.05 µmol/l HepG2 0.4 µmol/l 0.2 µmol/l 0.1 µmol/l 0.05 µmol/l CHO 0.4 µmol/l 0.2 µmol/l 0.1 µmol/l 0.05 µmol/l 
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Q
オートファジーにはどのような経路があり、 DAPRedはどの状態を検出するのですか？
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A
オートファジーには、Atg5依存的オートファジー(LC3が変化する)とLC3の変化を伴わない、Atg5非依存的オートファジーがあることが知られております*。
DAPRedはオートファゴソーム膜に取り込まれ疎水環境下で蛍光を発し、オートファゴソームの状態を検出します。
*参考資料 : 新たなオートファジー機構の発見 清水重臣
▶初めて検出する細胞種や実験系の場合は、よくある問い合わせ【 DAPRedの最適濃度の検討手順】をご参照ください。
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Q
どのくらいの時間まで蛍光検出できますか？
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A
染色後72時間まで観察できた実績がございます。
取扱条件
関連製品
この製品に関連する研究では、下記の関連製品も使われています。
